Презентация - Занятие 1. Световая микроскопия

Занятие 1. Световая микроскопия Доронина Татьяна Валерьевна 2019 год Московский государственный университет имени М. В. Ломоносова Биологический факультет Кафедра клеточной биологии и гистологии

Строение светового микроскопа предметный столик узел смены объективов объективы окуляры конденсор тубусодержатель основание макро- и микровинты регулятор интенсивности света источник света бинокулярная насадка

Оптическая система светового микроскопа источник света линза конденсора линза объектива препарат линза окуляра первичное изображение (действительное) вторичное изображение (мнимое)

Разрешающая способность светового микроскопа 0.61λ n x sinα d α - угол между оптической осью объектива и наиболее отклоняющимся лучом, попадающим в объектив n – показатель преломления среды, лежащей между объектом наблюдения и объективом λ - длина волны света, используемого для освещения объекта А - числовая (нумерическая) апертура А n x sinα

Слайд И. А. Воробьева

Слайд И. А. Воробьева

Общие правила работы с микроскопом Нельзя переносить микроскоп за «горловину»: необходимо всегда второй рукой поддерживать его снизу . При работе с микроскопом нельзя применять большие усилия. Ни в коем случае нельзя касаться пальцами поверхности линз, зеркал и светофильтров . Чтобы предохранить внутренние поверхности объективов, а также призмы тубуса от попадания пыли, необходимо всегда оставлять окуляр в тубусе . Объективы должны находится в чистом состоянии. По окончании работы на микроскопе необходимо тщательно удалить остатки иммерсионного масла с фронтальной линзы объектива. После окончания работы на препарат должен был наведен объектив с малым увеличением. Нельзя оставлять «смотрящим вниз» объектив с увеличением 40х или 90х. Запрещается использовать иммерсионную жидкость с неиммерсионными объективам и .

Фазово-контрастная микроскопия

Флуоресцентная микроскопия

Флуоресцентная микроскопия

Основы микроскопической техники Приготовление гистологических препаратов Световая микроскопия (обычная) эпителиальная ткань стенка толстой кишки

Мазки (костный мозг, кровь, ликвор); Пленки (брыжейки, нервная ткань); Отпечатки (печень, селезенка); Клетки культур; Гистологические срезы; Давленые препараты; Живые клетки (окрашенные с помощью витальных красителей) Витальные красители Акридиновый оранжевый (ядро) Янус зеленый (митохондрии) Нейтральный красный (лизосомы) Объекты

Гистологические препараты постоянные временные живые клетки нужна фиксация клеток

1. Забор материала Фиксатор стабилизирует структуру и предотвращает аутолиз V фиксатора V кусочка в 10 раз!! Опускать кусочек в жидкость! 2. Фиксация Фиксатор Материал должен быть свежий Кусочек ткани – 0,3 – 0,5 см 3

Фиксаторы простые (из одного вещества или его раствора) Спирты Ацетон Альдегиды: (формалин, глутаровый альдегид) Тетраоксид осмия cложные (из нескольких компонентов) Фиксатор Буэна (пикриновая и ледяная уксусная кислота, формалин) Фиксатор Карнуа (ледяная уксусная кислота, хлороформ, спирт) ФСУ (формалин, спирт, уксусная кислота)

3. Обезвоживание 70 спирт 96 спирт 100 спирт хлороформ (или толуол, или ксилол)

4. Заливка в парафин хлороформ (толуол) парафин (парафиновая каша ), 37 (жидкая) расплавленный при 56 парафин (в бумажной коробочке) из затвердевшего парафина - кубики с заключенным в них объектом. Кубики наклеиваются на деревянные подставки и укрепляются на микротоме. Термостат 37 С Термостат 56 С

5. Получение срезов на микротоме 6. Наклеивание срезов на предметное стекло Получение срезов толщиной 2-4 мкм. Ленту срезов переносят на предметное стекло, заранее смазанное белком, расправляют под бинокуляром с помощью препаровальных игл и кладут на нагревательный столик (37 ), чтобы срезы хорошо присохли. нагревательный столик

7. Депарафинирование 70 спирт 96 спирт 100 спирт 2 смены хлороформ (или толуол, или ксилол) 2 смены дистиллированная вода Для того чтобы срез ткани, залитый в парафин, окрасить, его надо подвергнуть обработке, в результате которой из среза удаляется парафин, препятствующий проникновению красителя, и ткань пропитывается водой, после чего может быть окрашена водными красителями

8. Окрашивание Ядерные красители Цитоплазматические красители основные протравные (образуют с нуклеиновыми кислотами и кислыми белками ядра солеобразные соединения) азур, толуидиновый синий, метиленовый синий, метиловый зеленый, и др. гематоксилин, кармин, ализарин и др. В основном представляют собой карбоновые или сульфоновые кислоты, которые в тканях связываются с основными белками цитоплазмы, содержащими аргинин, лизин, оксилизин, гистидин. эозин, кислый фуксин, светлый зеленый и др.

Красители Натуральные красители Синтетические красители Красители Основные красители (гематоксилин, тионин, кармин, азур, метиленовый зеленый ) Нейтральные красители судан III, судан IV, метиленовый синий Кислотные красители (эозин, кислый фуксин, конго красный) Красители Прогрессивные красители Регрессивные красители

Гематоксилин Кампешевое дерево (Южная Америка) Гематоксилин (бесцветный) Гематеин (окрашен) С протравой гематеин образует солеобразное соединение – лак, которое окрашивает ядра

Эозин Цитоплазматический краситель

70 спирт 96 спирт 100 спирт толуол, (или ксилол) дистиллированная вода 9. Обезвоживание 10. Заключение под покровное стекло Канадский бальзам/ Bio Mount/Depex и т.д.

Гистологические препараты постоянные временные живые клетки фиксация клеток обезвоживание заливка в парафин получение срезов на микротоме наклеивание срезов на предметное стекло депарафинирование окрашивание обезвоживание заключение под покровное стекло в каплю канадского бальзама

Культура клеток и тканей Клетки могут расти в культуре в течение длительного времени, если: снабжать клетки необходимыми питательными веществами обеспечить асептические условия на всех стадиях работы

Культуры клеточные растут в виде монослоя, не формируют трехмерных комплексов тканевые трехмерная структура Первичная культура – культура клеток, взятая непосредственно из живого организма Пассирование (субкультивирование) – процесс пересева клеток Эмбриональные ткани выдерживают 50 пассажей, обычные – 20 (лимит Хейфлика) Клонирование – получение клеточной линии из индивидуальной клетки

He La Линия была получена 8 февраля 1951 года из раковой опухоли шейки матки пациентки Генриетты Лакс

Ламинарный бокс

Ламинарный бокс

Культуральная посуда матрас фалькон

Культуральная посуда

Культуральная среда раствор аминокислот, витаминов, глюкозы и т.д. на основе сбалансированного буферного раствора (обеспечивает осмотическое давление ) p H 7.2-7.5 (достигается с помощью системы бикарбонат натрия/СО2 )

Для нормального роста клеток нужны: Культуральная среда Сыворотка L-глутамин (добавлять перед началом работы со средой, т.к. в водном растворе быстро разлагается) Антибиотики (обеспечение стерильности)

Эпителий почки кролика просвет канальца просвет канальца клетки эпителия